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癌癥的真相 | 新一代測(cè)序下的融合基因分析
發(fā)布時(shí)間:2021-03-29 瀏覽次數(shù):7115
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染色體重排導(dǎo)致的基因融合事件廣泛存在于多種腫瘤當(dāng)中。例如在人類基因組研究中發(fā)現(xiàn),異常的融合基因可引起惡性血液疾病以及腫瘤,包括 EMLA-ALK 和 BCR-ABL1 融合基因?qū)е掳籽?,TMPRSS2-ERG(前列腺癌),EML4-ALK( 肺癌),VTI1A-TCF7L2( 直腸癌)[1]。由于基因融合產(chǎn)物是腫瘤中常見驅(qū)動(dòng)因素,因此可作為抗癌治療中潛在的預(yù)后和治療靶標(biāo)。小編之前著重介紹和比較了當(dāng)下檢測(cè)融合基因的相關(guān)技術(shù),由于新一代測(cè)序(NGS) 技術(shù)的不斷發(fā)展和廣泛應(yīng)用,利用生物信息學(xué)方法來檢測(cè)融合突變也取得了較大的進(jìn)展,因此本專題主要介紹 NGS 技術(shù)包括 RNA 和 DNA 兩個(gè)層面及其相關(guān)的生信方法。

新一代測(cè)序檢測(cè)融合基因主要有全基因組測(cè)序(WGS)、轉(zhuǎn)錄組測(cè)序(RNA-seq) 和目標(biāo)區(qū)域靶向(根據(jù)靶向富集方法不同又分為雜交捕獲和擴(kuò)增子測(cè)序)等技術(shù)。一般而言,WGS 應(yīng)該在合理的測(cè)序深度下進(jìn)行融合基因檢測(cè),一般要求~30-60X,這對(duì)于腫瘤標(biāo)本的低克隆性融合尤為重要。與之相反,RNA-seq 由于只能檢測(cè)轉(zhuǎn)錄和剪接成熟 mRNA 的基因組區(qū)域,因此只能檢測(cè)到相對(duì)高表達(dá)的融合。此外,根據(jù)已知的融合位點(diǎn),設(shè)計(jì)特定的檢測(cè)探針,采用靶向捕獲 DNA 或 RNA panel 測(cè)序獲得遠(yuǎn)高于 WGS 的測(cè)序深度,從而可以更敏感的檢測(cè)出融合基因,因此該技術(shù)在臨檢領(lǐng)域更為適用。測(cè)序讀長取決于 NGS 的平臺(tái),在檢測(cè)融合基因時(shí)推薦較長的讀長,從而盡可能捕獲到斷裂點(diǎn) [2]。


檢測(cè)技術(shù)

檢測(cè)層面

主要實(shí)驗(yàn)過程

全基因組重測(cè)序(WGS)

DNA

基因組 DNA 隨機(jī)片段化,加接頭,測(cè)序

目標(biāo)區(qū)域雜交捕獲測(cè)序

DNA/RNA

文庫制備,加接頭,特異性 DNA/RNA 序列富集,擴(kuò)增后測(cè)序

轉(zhuǎn)錄組測(cè)序(RNA-seq)

RNA

mRNA 反轉(zhuǎn)錄 cDNA 并制備文庫

目標(biāo)區(qū)域擴(kuò)增子測(cè)序

RNA

在融合點(diǎn)處擴(kuò)增測(cè)序

核酸質(zhì)譜 (MassArray)

RNA

反轉(zhuǎn)錄,PCR,引物延展,基質(zhì)輔助激光解吸 / 電離

數(shù)字化基因定量(NanoString)

RNA

序列特異性雜交


融合基因檢測(cè)常用基因組方法  [2]




01.RNA 測(cè)序檢測(cè)融合基因

RNA 測(cè)序技術(shù)能夠很好地識(shí)別物種中產(chǎn)生異常變異的 RNA 種類,使發(fā)現(xiàn)因功能性或互作關(guān)系引起的基因融合及其導(dǎo)致的病變研究成為可能。雙端配對(duì)的 RNA 測(cè)序能夠提高基因的覆蓋率,因此對(duì)檢測(cè)基因融合具有特別的優(yōu)勢(shì),該方法已被用于病理學(xué)的研究,并為調(diào)控與治療提供潛在的可能性。目前已經(jīng)有很多生物學(xué)工具基于高通量測(cè)序數(shù)據(jù)來檢測(cè)融合基因,如 FusionSeq、deFuse、TopHat-Fusion、Fusion-Hunter、STAR-Fusion 等。


RNA 測(cè)序檢測(cè)融合基因主要有兩種分析策略:

1、基于序列比對(duì)的方法,尋找不一致序列(discordant pair reads) 和覆蓋斷裂點(diǎn)的序列(junction/split reads) 從而識(shí)別出融合事件。

2、基于拼接比對(duì)的方法,首先組裝出新的轉(zhuǎn)錄本,然后比對(duì)到基因組,從而鑒定出與染色體重排一致的融合轉(zhuǎn)錄本  [3]。



1

RNA-seq 檢測(cè)融合基因的兩種分析策略 [3]


目前針對(duì) RNA-seq 已經(jīng)開發(fā)出很多檢測(cè)融合基因的生信工具,大多都是基于以上兩種分析策略進(jìn)行預(yù)測(cè)的。對(duì)于融合基因檢測(cè),RNA-seq 是一種非常高效的方法,可以在較低成本下對(duì)全基因組范圍內(nèi)的融合基因進(jìn)行檢測(cè),其分辨率和通量比傳統(tǒng)方法要高很多,并且還能發(fā)現(xiàn)新的融合基因。

2

RNA-seq 檢測(cè)融合基因工具匯總 [3]


分析工具測(cè)評(píng)結(jié)果顯示,大多數(shù)情況下,STAR-Fusion 在所有檢測(cè)工具中的排名高,其次是 Arriba 和 STAR-SEQR,見下圖。在組裝比對(duì)策略中,TrinityFusion- C 工具排名高。值得注意的是,排名前三的工具都是采用 STAR 工具進(jìn)行比對(duì)的。


3

RNA-seq 分析融合基因工具準(zhǔn)確性評(píng)估 [3]


02.DNA 測(cè)序檢測(cè)融合基因

DNA 測(cè)序也可以對(duì)融合基因進(jìn)行檢測(cè),由于融合基因大多發(fā)生在內(nèi)含子區(qū)域,采用 WGS 對(duì)整個(gè)基因組進(jìn)行測(cè)序的方法往往成本較高,目前對(duì)于已知融合位點(diǎn)的檢測(cè),推薦目標(biāo)區(qū)域靶向(panel)  測(cè)序。融合基因作為結(jié)構(gòu)變異(SV) 的一種類型,采用 DNA 測(cè)序分析融合基因的策略主要包括:

1、雙端序列配對(duì)法(pair-end method)

該方法總體思路是將雙端序列比對(duì)到基因組上,然后評(píng)估雙端配對(duì)序列的距離和方向是否和建庫信息一致。

6

2、斷裂序列法(split-read approach)

獲得比對(duì)到基因組上的單端序列,將未能比對(duì)上的那部分序列切斷,然后重新進(jìn)行比對(duì),獲得比對(duì)位置和比對(duì)方向。

7

目前針對(duì) DNA 測(cè)序開發(fā)出許多檢測(cè)結(jié)構(gòu)變異(SV) 的生信工具,見下圖,也有專門檢測(cè)融合基因的工具,比如 BreakID 和 GeneFuse 等工具。檢測(cè)融合基因的工具大多基于以上兩種分析策略進(jìn)行預(yù)測(cè)的。不同的預(yù)測(cè)工具采用的策略有所不同,可以結(jié)合不同的檢測(cè)工具來獲得更好的靈敏度。當(dāng)然,這種綜合的方法并非是結(jié)果簡單整合,而是優(yōu)先考慮更準(zhǔn)確的策略,例如斷裂序列法要優(yōu)先于雙端序列配對(duì)法 [5]。

8

總的來說,過去的十幾年里,新一代測(cè)序技術(shù)在融合基因檢測(cè)方面發(fā)揮著越來越重要的作用,有著其他技術(shù)無法比擬的優(yōu)勢(shì)。隨著測(cè)序技術(shù)的不斷發(fā)展,產(chǎn)生的讀長更長,也為融合基因的檢測(cè)帶來了新的機(jī)遇和挑戰(zhàn)。


參考文獻(xiàn):

[1] Qingguo Wang, Junfeng Xia, Peilin Jia, et al. Application of next generation sequencing to human gene fusion detection: computational tools, features and perspectives. Brief Bioinform, 2013, 14(4): 506-519.

[2] Jan Schr?der , Amit Kumar , Stephen Q Wong. Overview of Fusion Detection Strategies Using Next-Generation Sequencing. Methods Mol Biol, 2019:125-138.

[3] Brian J , Alexander Dobin, Bo Li, et al. Accuracy assessment of fusion transcript detection via read-mapping and de novo fusion transcript assembly-based methods. Genome Biol, 2019, 20(1): 213.

[4] Haley J and Eric Duncavage. Detection of structural DNA variation from next generation sequencing data: a review of informatic approaches. Cancer Genet. 2013, 206(12): 432-440.

[5] Peiyong Guan, Wing-Kin Sung. Structural Variation Detection Using Next-Generation Sequencing Data: A Comparative Technical Review. Methods, 2016,102:36-49.


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